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全蛋白提取试剂盒

DM0055
规格:价格:
50T¥520
100T¥880
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产品详情

全蛋白提取试剂盒

产品简介:

 全蛋白提取试剂盒由蛋白提取试剂、磷酸酶抑制剂、蛋白酶抑制剂和 PMSF 组成, 用于对哺乳动物组织和培养细胞进行匀浆裂解, 从中提取全蛋白。本产品作用温和, 提取过程简便高效,获得的全蛋白可用于 Western Blot、免疫共沉淀等后续研究, 但不能用于蛋白激酶及磷酸酶免疫共沉淀的研究, 因本试剂盒中包括这两种酶的抑制剂。该试剂仅  用于科研领域, 不适用于临床诊断或其他用途。


产品组成:

编号

名称

DM0055

50T

DM0055

100T

 

Storage

试剂(A): 蛋白提取试剂

50ml

100ml

4℃

试剂(B): 磷酸酶抑制剂(100×)

0.5ml

1ml

-20℃ 避光

试剂(C): 蛋白酶抑制剂(100×)

0.5ml

1ml

-20℃ 避光

试剂(D): PMSF 溶液(100mM)

0.5ml

1ml

-20℃

说明书

一份

操作步骤(仅供参考):

1、配制预冷的全蛋白提取工作液:

在每 1ml 蛋白提取试剂中加入 10μl 磷酸酶抑制剂(100×), 10μl 蛋白酶抑制剂(100 ×)和 10μl PMSF 溶液(100mM), 混匀, 冰上保存待用。

2、组织蛋白提取:

(1)每 100mg 固体组织置于培养皿中, 手术剪剪碎成 3mm×3mm 左右的小块,加入 0.5 ~ 1ml 预冷的全蛋白提取工作液, 玻璃匀浆器上下手动匀浆 30-50 次, 注意低温操作;

(2)取组织匀浆液转移到 1.5ml 预冷的离心管, 12000g 4℃  离心 5min;

(3)取上清转移至新的预冷的离心管中, 即为全蛋白提取物, 蛋白定量 (Bradford 法、 BCA 法) ;

(4)分装保存于-70℃ ,  避免反复冻融。



3、培养细胞蛋白提取:


(1)贴壁培养的细胞, 吸去培养基后, 加入 10ml/150mm 培养板的冷 PBS 洗两次, 每次振 摇数次以尽量去除培养液;

(2)悬浮培养的细胞或用细胞刮子刮下的贴壁细胞,将细胞及培养液移至离心管中, 500g 离


8、一般常规提取的蛋白样品, 进行后续试验不需要透析, 但如果需要较大量的提取蛋白或 后续试验结果不理想, 则需要将提取的蛋白样品进行透析脱盐。

9、对于提取的蛋白质可以采用 BCA 蛋白定量试剂盒(PT0001)、Bradford 蛋白定量试剂盒 (PT0002)或微量 BCA 蛋白定量试剂盒(PT0006)对提取样品中的蛋白质进行定量。

10、对胶上的蛋白质进行染色, 可以采用常规考马斯亮蓝染色试剂盒(PT0020)或考马斯亮 蓝快速染色液(免脱色)(PT0015)来染色。

11、裂解产物中经常会出现一小团透明胶状物, 属正常现象, 该透明胶状物为含有基因组DNA 等复合物, 在不检测和基因组 DNA 结合特别紧密的蛋白的情况下可以直接离心取 上清用于后续实验; 如果需要检测和基因组结合特别紧密的蛋白, 则可以通过超声处理  打碎打散该透明胶状物, 随后离心取上清用于后续实验。

12、使用后请旋紧瓶盖, 防止溶液挥发和与空气中的物质发生化学反应。

13、试剂开封后请尽快使用, 以防影响后续实验效果。

14、为了您的安全和健康, 请穿实验服并戴一次性手套操作。



有效期: 12 个月有效; 低温运输, 按要求保存。

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(3)细胞洗涤后, 转至新的预冷的离心管中, 加入预冷的全蛋白提取工作液, 加入量如下表

所示:

细胞数量

培养板或培养瓶规格

全蛋白提取工作液加入量

107 个

100mm 培养板或 150cm2 培养瓶

1ml ~2ml

5 × 106 个

60mm 培养板或 75cm2 培养瓶

0.5ml~ 1ml

(4)置于 4℃摇床平台上, 剧烈振荡 30s, 放置冰上 4 分钟, 重复 5 次;

(5) 12000g 4℃离心  5min, 取上清为全蛋白提取物, 蛋白定量 (Bradford 法、BCA 法);

(6)分装保存于-70℃ ,  避免反复冻融。



注意事项:

1、所有的试剂及器具均需预冷后使用, 以保持蛋白质的完整性和活性。细胞裂解的操作应 置于冰上或 4℃进行。

2、蛋白提取试剂含有  特殊成分, 在低温情况下可能出现浑浊现象, 可 37℃水浴 促其溶解, 不影响使用效果; 溶解时间不易过长, 避免成分失效, 4 度保存即可, 长期  不用亦可-20℃保存。

3、 PMSF 溶液可置 4℃保存 1~2 周, -20℃可保存 1 年以上, 室温放置 2 天即可能失效。 另外, PSMF(有毒)需现用现加, 因为 PMSF 在水溶液中会快速降解。

4、如果细胞量较多, 必需分装成 50~ 100 万细胞/离心管, 然后再裂解, 大团的细胞较难 裂解充分, 而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触, 相对比较容易裂解充分。

5、如果组织样品本身非常细小, 可以适当剪切后直接加入裂解液裂解, 通过强烈 Vortex  使样品裂解充分, 然后同样离心取上清用于后续实验, 直接裂解的优点是比较方便, 不 必使用匀浆器, 缺点是不如使用匀浆器裂解的充分。

6、如果裂解不充分可以适当增加裂解液的用量, 如果需要高浓度的蛋白样品, 可以适当减 少裂解液的用量或增加样品量。

7、 除振荡裂解外, 亦可采用超声破碎法, 每次 30s, 间隔 1min, 连续超声 3~4 次, 置于 冰上冷却。超声破碎细胞后应镜检, 细胞破碎率不小于 90%。